微生物高通量检测简介

高通量介绍

高通量测序(High-Throughput Sequencing)又名下一代测序(Next Generation Sequencing,NGS),以能一次并行对几十万到几百万条DNA分子进行序列测定和一般读长较短等为标志。目前, 通过illumina公司为代表的二代高通量测序技术,对样本中16S rRNA 基因/18S rRNA基因/ITS进行大规模测序,根据结果数据进行生物信息学分析,获得待测样本的物种组成与丰度信息,是用来研究样品群落的物种组成、物种间的进化关系以及样本群落的多样性的常用方法。

微生物16S rRNA 基因/18S rRNA基因/ITS 简介

01 细菌核糖体RNA
细菌核糖体RNA(rRNA)有三种类型:5S rRNA(120bp)、16S rRNA(约1540bp)和23S rRNA(约2900bp)。16S rDNA基因是编码细菌16S 核糖体的基因,存在于所有细菌的基因组中,在细菌各种属间既有高度保守性,又存在一定差异,适于作为细菌多样性分析的标准;广泛应用于细菌种属的分子生物学鉴定。该序列包含9个高变区和10个保守区, 通过对某一段高变区域  (V3-V4区或V4-V5区)进行PCR扩增, 可以得到300-500bp左右的片段。16S测序适用于粪便,皮肤,口腔,生殖道等人体微生物样本及土壤,水体等环境微生物中菌群检测
02 真核生物 18S rRNA
真核微生物中也有三类核糖体RNA(rRNA),包括5.8S rRNA、18S rRNA和28S rRNA。  18S rRNA基因是编码真核生物核糖体小亚基的DNA序列,序列中既有保守区,也有可变区。其中,V4区使用最多、数据库信息最全、分类效果最好。18S测序主要适用于酵母,浮游藻类,及共生的真核生物菌群检测。
03 ITS序列
ITS序列是内源转录间隔区(Internally Transcribed Spacer),位于真菌18S、5.8S和28S rRNA基因之间,分别为ITS 1和ITS 2。在真菌中,5.8S、18S和28S rRNA基因具有较高的保守性,而ITS表现出极为广泛的序列多态性。而且ITS的保守型体现在种间差异较明显,种内相对一致,能够反映出种属间,甚至菌株间的差异。ITS 1和ITS 2长度分别为350 bp和400 bp,广泛用于真菌不同种属的系统发育分析。ITS测序测序适用于植物病源菌,土壤微生物中真菌的检测。

高通量测序流程

微生物高通量测序流程一般包括样本制备(sample fragmentation),文库构建(library preparation),测序反应(sequencing reaction)和数据分析(data analysis)四个部分。在样本 DNA提取后进行质控,通过上述16S rRNA 基因/18S rRNA基因/ITS 特异引物进行扩增建库,上机测序后对得到的数据进行生物信息学分析。

分析结果-物种组成及丰度的获取

  高通量测序下机后,首先对测试数据进行质控。由于每个样品的测序序列达到几万条,不可能也没必要对每条序列进行物种注释。因此在微生物多样性研究中,引入了OTU的概念。通过归类操作,将测序得到序列进行整理,并按照一定的相似程度(一般按97%)进行聚类,根据彼此的相似性分归为许多小组,一个小组就是一个OTU(Operational Taxonomic Units)。从OTU中选择一条代表序列与数据库进行比对获得分类地位信息,便是该OTU的分类地位信息(注释结果)。
      在细菌16S全长比对中,97%相似性可以认定为同一个种,因此一个OUT可能是属于一个种的微生物。16S的任何一个或几个高变区内尽管具有很高的特异性, 但是某些物种(特别是在种水平)在这些高变区可能非常相近,能够区分它们的特异性片段可能不在扩增区域内。因此,在16S高通量测序的注释结果中,解释度最可靠的分类学地位是“属”水平。
将OUT综合分类表中的信息按不同的物种水平分别提取信息,统计得到各样本在不同分类水平上的菌群组成及丰度信息。

分析结果-物种多样性分析、组间差异分析、功能预测

在上述OUT 分类信息的基础上,通过生物信息学手段,得到样本微生物的物种多样性分析、组间差异分析、功能预测等信息。物种多样性分析是16S测序结果分析的核心内容。尤其是Alpha多样性和Beta多样性。通过统计学分析,对数据进行PCA 和PCoA 分析,得出不同分组样本间微生物主要组成成分是否存在差异,对差异显著性进行分析,并进一步通过RDA 分析,找到与环境因子(疾病)等相关的微生物群落组成,进行环境因子(疾病)预测模型构建。微生物的群落功能组成比物种组成与环境关系更为密切。可以利用PICRUSt、BugBase、FUNGuild等软件对16S/ITS的测序结果进行功能预测。可采用OTU的代表序列及OTU丰度来执行相关软件的预测功能分析,或者将差异OTU来进行PICRUSt分析,将差异OTU与细菌自身的基因组功能建立联系,进行功能差异分析。
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